小鼠肺微血管内皮细胞构成半选择性屏障，对肺部气体交换、液体与可溶物在血液与肺间质之间的流动具有重要作用。此外，这些细胞还具备一定的代谢功能，能够执行非呼吸相关的功能。在肺损伤时，肺微血管内皮细胞是活性氧类的重要靶细胞之一。肺炎发生过程中，神经体液介质和氧化剂对内皮细胞的影响增加了细胞间隙的渗透性，使得血液中的蛋白质进入间质。这种渗透性的增加会导致低氧血症，进而出现成人呼吸窘迫综合征及非心源性肺水肿。

小鼠肺微血管内皮细胞可从实验动物的正常肺组织中提取，细胞呈上皮样、多角形，经过贴壁培养，并采用CD31免疫荧光染色确认其为阳性，细胞纯度高于90%，且未检测到HIV-1、HBV、HCV、支原体、细菌、酵母和真菌。

实验所需仪器设备及试剂

环亚集团·AG88提供了多种实验所需的仪器和试剂：

仪器设备

• 生物安全柜 BSC-1500ⅡA2-X
• CO2细胞培养箱 BC-J160S
• 荧光倒置显微镜 DS-Ri2
• 高速冷冻离心机 Multifuge X1R
• 电热恒温鼓风干燥箱 DHG-9123A
• 电热恒温震荡水槽 DK-2B

试剂耗材

• T25细胞培养瓶 430639
• 血球计数板 Neubauer improved
• 24孔板专用细胞爬片 YA0350
• 细胞培养孔板 WHB-24
• 胎牛血清 1414426
• 内皮细胞培养基 Primed-icell-0020
• 25%胰蛋白酶（含0.02% EDTA） 1734858

小鼠肺微血管内皮细胞的分离培养方法

以下是小鼠肺微血管内皮细胞的分离与培养步骤：

1. 将5-10天大的乳鼠浸泡在75%乙醇中，然后移入生物安全柜进行操作。
2. 在解剖乳鼠的胸部后，取出双肺并放入预冷的PBS中，尽量去除结缔组织等杂质。
3. 取用肺的边缘部分，将其剪碎，并将组织块移入T25培养瓶中，倒置于细胞培养箱内。
4. 2小时后，向培养瓶中注入2 mL内皮培养基，并小心将培养瓶正置于培养箱中，确保组织块保持在底部。
5. 每3天更换2 mL培养基，待细胞从组织块中迁移出来后，隔2天再更换培养基，待细胞融合达到60-70%时，去除组织块并将肺微血管内皮细胞重新接种。

如需更多分离和培养方法，请访问镜像绮点网站，并了解环亚集团·AG88的最新科研动态。